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网上科普有关“动物学实验的实验动物常见的处理方法 ”话题很是火热 ，小编也是针对动物学实验的实验动物常见的处理方法寻找了一些与之相关的一些信息进行分析，如果能碰巧解决你现在面临的问题 ，希望能够帮助到您。
一、编号
实验动物常需要标记以示区别 。编号的方法很多 ，根据动物的种类数量和观察时间长短等因素来选择合适的标记方法 。
(一)挂牌法：将号码烙压在圆形或方形金属牌上(最好用铝或不锈钢的,它可长期使用不生锈),或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带上，将此颈圈固定在动物颈部。该法适用于狗等大型动物 。
(二)打号法：用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上 。打号前用蘸有酒精的棉球擦净耳朵 ，用耳号钳刺上号码 ，然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。该法适用于耳朵比较大的兔 、狗等动物 。
(三)针刺法：用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水，在耳部 、前后肢以及尾部等处刺入皮下 ，在受刺部位留有一黑色标记 。该法适用于大小鼠、豚鼠等。在实验动物数量少的情况下 ，也可用于兔 、狗等动物 。
(四)化学药品涂染动物被毛法：经常应用的涂染化学药品有
涂染红色：0.5%中性红或品红溶液
涂染**：3-5%苦味酸溶液
涂染黑色：煤焦油的酒精溶液
根据实验分组编号的需要，可用一种化学药品涂染实验动物动物背部被毛就可以 。如果实验动物数量较多，则可以选择两种染料。该方法对于实验周期短的实验动物较合适 ，时间长了染料易退掉；对于哺乳期的子畜也不适合 ，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五)剪毛法：该法适用于大 、中型动物，如狗、兔等 。方法是用剪毛刀在动物一侧或背部剪出号码 ，此法编号清楚可靠 ，但只适于短期观察 。
(六)打孔或剪缺口法：可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一定的号码。如用剪子剪缺口,应在剪后用滑石粉捻一下,以免愈合后看不出来 。该法可以编至1～ 9999号，此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用 。
二 、分组
(一)分组的原则：进行动物实验时 ，经常需要将选择好的实验动物按研究的需要分成若干组。动物分组应按随机分配的原则 ，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去，以避免各组之间的差别,影响实验结果 ，特别是进行准确的统计检验,必须在随机分组的基础上进行 。
每组动物数量应按实验周期长短 、实验类型及统计学要求而定 。如果是慢性实验或需要定期处死动物进行检验的实验 ，就要求选较多的动物，以补足动物自然死亡和认为处死所丧失的数量 ，确保实验结束时有合乎统计学要求的动物数量存在。
(二)建立对照组：分组时应建立对照组 。1.自身对照组：是指实验数据而言 。实验动物本身在实验处理前、后两个阶段的各项相关数据就分别是对照组和实验组的实验结果 ，此法可排除生物间的个体差异。2.平行对照组：有正对照组和负对照组两种 。给实验组动物某种处理，而给正对照组用同样方法进行处理，但并不采用实验所要求的药物或手段 ，负对照组则不给任何处理 。3.具体分组时 ，应避免人为因素, 随机把所有的动物进行编号，然后令其双数为A组(实验组),单数为B组(对照组)即可或反之。如果要分若干个组时 ，应该用随机数字表示进行完全随机分组。 一、实验动物的除毛
在动物实验中 ，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去 。除去被毛的方法有剪毛 、拔毛 、剃毛和脱毛等 。
(一)剪毛法：剪毛法是将动物固定后 ，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿 ，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤 。剪下的毛应集中放在一容器内 ，防止到处飞扬 。给狗、羊等动物采血或新生乳牛放血制备血清常用此法。
(二)拔毛法：拔毛法是用拇指和食指拔去被毛的方法 。在兔耳缘静脉注射或尾静脉注射时常用此法 。
(三)剃毛法：剃毛法是用剃毛刀剃去动物被毛的方法。如动物被毛较长 ，先要用剪刀将其剪短，再用刷子蘸温肥皂水将剃毛部位浸透 ，然后再用剃毛刀除毛 。本法适用于暴露外科手术区 。
(四)脱毛法：脱毛法是用化学药品脱去动物被毛的方法。首先将被毛剪短 ，然后用棉球蘸取脱毛剂，在所需部位涂一薄层，2～3分钟后用温水洗去脱落的被毛 ，用纱布擦干 ，再涂一层油脂即可 。
适用于狗等大动物的脱毛剂配方为：硫化钠10g，生石灰15g ，溶于100ml水中 。
适用于兔 、鼠等动物的脱毛剂的配方为：1. 硫化钠3g,肥皂粉1g,淀粉7g,加适量水调成糊状；2. 硫化钠8g,淀粉7g ，糖4g，甘油5g ，硼砂1g,加水75ml；3. 硫化钠8g溶于100ml水中。
二 、实验动物的给药
在动物实验中 ，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样 ，可根据实验目的 、实验动物种类和药物剂型 、剂量等情况确定 。
(一)注射给药法
1. 皮下注射 注射时用左手拇指及食指轻轻捏起皮肤 ，右手持注射器将针头刺入,固定后即可进行注射 。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；蛙可在脊背部淋巴囊注射；狗多在大腿外侧注射 ，拔针时 ，轻按针孔片刻，防药液逸出。
2. 皮内注射 此法用于观察皮肤血管的通透性变化或观察皮内反应 。 如将一定量的放射性同位素溶液 、颜料或致炎物质 、药物等注入皮内，观察其消失速度和局部血液循环变化 ，作为皮肤血管通透性观察指标之一 。方法是：将动物注射部位的毛剪去 ，消毒后，用皮试针头紧贴皮肤皮层刺入皮内 ，然后使针头向上挑起并再稍刺入 ，即可注射药液。注射后可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘 。
3. 肌肉注射 当给动物注射不溶于水而混悬于油或其他溶剂中的药物时,常采用肌肉注射 。肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位，多选臀部。注射时针头要垂直快速刺入肌肉 ，如无回血现象即可注射 。给大 、小鼠作肌肉注射时 ，选大腿外侧肌肉进行注射 。
4. 腹腔注射 先将动物固定,腹部用酒精棉球擦试消毒，然后在左或右侧腹部将针头刺入皮下 ，沿皮下向前推进约0.5厘米 ，再使针头与皮肤呈45 度角方向穿过腹肌刺入腹腔，此时有落空感 ，回抽无肠液 、尿液后 ，缓缓推入药液。此法大小鼠用的较多 。
5. 静脉注射 是将药液直接注射于静脉管内，使其随着血液分布全身,迅速奏效 。但排泄较快，作用时间较短。
6. 淋巴囊注射 蛙类常采用此法,其皮下有数个淋巴囊 ，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头部淋巴囊常作为蛙类给药途径 。一般多选用腹部淋巴囊给药 。注射时将针头从蛙大腿上端刺入 ，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下 ，即进入淋巴囊 ，然后注入药液。
(二)经口给药法
1. 口服法：把药物放入饲料或溶于饮水中让动物自动摄取 。此法优点在于简单方便，缺点是不能保证剂量准确 。一般适用于对动物疾病的防治或某些药物的毒性实验 ，制造某些与食物有关的人类疾病动物模型。
2. 灌胃法：在急性实验中,多采用灌胃法 。此法剂量准确 。灌胃法是用灌胃器将所应投给动物的药灌到动物胃内。灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成 。小鼠的灌胃针长约4～5cm ，直径为1mm，大鼠的灌胃针长约6～8cm ，直径约1.2mm 。灌胃针的尖端焊有一小圆金属球 ，金属球为中空的。焊金属球的目的是防止针头刺入气管或损伤消化道 。针头金属球端弯曲成20°左右的角度，以适应口腔、食道的生理弯曲度走向 。
(三)其它途径给药方法
1. 呼吸道给药：呈粉尘、气体及蒸气或雾等状态的药物或毒气,均需要通过动物呼吸道给药。如实验时给动物乙醚作吸入麻醉 、用锯末烟雾制作慢性气管炎动物模型等 ，特别在毒理学实验中应用更为广泛。
2. 皮肤给药：为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用 、局部作用、 致敏作用和光感作用等 ，均需采用经皮肤给药方法 。如兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定的药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收 。
3. 脊髓腔内给药：此法主要用于锥管麻醉或抽取脑脊液。
4. 脑内给药：此法常用于微生物学动物实验,将病原体等接种于被检动物脑内 ，然后观察接种后的各种变化 。
5. 直肠内给药：此种方法常用于动物麻醉 。兔直肠内给药时,常采用灌肠的胶皮管或用14号导尿管代替。
6. 关节腔内给药：此法常用于关节炎的动物模型复制 。
（1）鲫鱼在水里主要的运动方式是游泳 ，依靠的是成对的鳍．
（2）攻击行为：同种动物个体之间常常由于争夺食物 、配偶 、领地或巢区而发生相互攻击或战斗．可见，一头白猪和一头花猪为抢一块南瓜而撕咬起来 ，这是一种攻击行为．
防御行为是为了保护自己 ，防御敌害的各种行为都是防御行为．如逃跑、装死 、释放臭气 、保护色、警戒色 、机体防御等．花猪终于败下阵来，狼狈逃窜 ，这是花猪防御行为．
（3）屈肘时 ，肱二头肌收缩，肱三头肌舒张 ，伸肘时 ，肱三头肌收缩，肱二头肌舒张．我们往嘴里送食物时属于屈肘动作 ，因此手臂肱二头肌处于收缩状态 ，肱三头肌处于舒张状态．人体的任何一个动作，都是在神经系统的支配下，由于骨骼肌收缩 ，并且牵引了所附着的骨 ，绕着关节活动而完成的．
（4）成群的蝙蝠纷纷向空中飞去，身影便捷矫健 ，直到黎明才回到它们的巢里 ，这种行为从功能上说，既是一种先天性行为 ，是生来就有的行为 ，也是一种节律行为．
（5）一个蜂群中，由受精卵发育而成的个体是蜂王和工蜂．著名动物学家弗里施研究动物色觉时用到的主要研究方法是实验法．
故答案为：（1）游泳；鱼鳍；
（2）攻击；防御；
（3）收缩；神经系统；
（4）先天性；节律；
（5）蜂王和工蜂；实验法．
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